摘要
    利用传统和现代微生物分离、鉴定相结合手段，从细菌形态、生理生化指标、16S rDNA三方面确定了功能菌株的分类地位，并对其进行了活性研究。结果表明，该菌为一株未见报道的具有兼性厌氧聚磷功能的菌株，鉴定出该菌株与Acinetobacter sp具同源性高达99.3%，是还没有注册的新菌株。最佳碳源和氮源为乙酸钠、硫酸铵。缺氧聚磷阶段的最佳pH值为7。温度为35℃时的反硝化聚磷效果最好，30℃的效果次之，而20℃、25℃的效果一般，10℃，40℃效果最差。反硝化聚磷的缺氧阶段ORP值-50～-110mV之间氮、磷的去除效果较佳。以NO2-为电子受体完成反硝化聚磷过程更快更有效。
关键词：缺氧聚磷 反硝化聚磷菌 电子受体 生理生化指标

Abstract
      The functional bacterium was identified through traditional and modern isolation and identification methods. The taxonomic position was ascertained based on the investigation of configuration, physiological and biochemical properties, and 16Sr DNA analysis. The activity of the bacterium was investigated. The result shows: Gi is a kind of dephosphorization bacteria under anaerobic condition which is not reported. The 16Sr DNA analysis indicated the strain had a 99.3% of homology with Acinetobacter sp and not registered. Its best carbon source is sodium acetate and best nitrogen source is ammonium chloride. During the process of accumulating phosphorus the best pH value is 7.0 under anoxic condition. The best temperature is 35 ℃, and than 30 ℃, the effect of 20℃、25℃ is common, but 10℃ and 40℃ are the worst. The best ORP value during the anoxic state is between -50～-110mV.Nitrite is more efficient and quick to denitrify and accumulate phosphorus when it is used as electronic acceptor.
Keyword: accumulating phosphorus under anoxic condition; denitrifying phosphorus accumulating bacteria; electronic acceptor; physiological and biochemical properties

目录
1  前言 1
2  材料与方法 2
2.1 试验反应装置 2
2.1.1  SBR强化生物除磷装置 2
2.1.2  短程同步吸磷活性试验装置 3
2.2   供试材料 3
2.2.1菌种来源 3
2.2.2 培养基和基础培养液 4
2.2.2.1  牛肉浸膏蛋白胨培养基 4
2.2.2.2   聚磷菌基础培养液 4
2.2.2.3   短程同步吸磷活性试验用液 4
2.3   试验方法 5
2.3.1 短程反硝化聚磷菌Gi菌株的分离 5
2.3.2 短程反硝化聚磷菌Gi菌株显微形态观察 5
2.3.3 短程反硝化聚磷菌Gi菌株的生理生化指标[12-14] 5
2.3.4  DNA提取、PCR扩增、基因序列比对及进化树构建 5
2.3.5 短程反硝化聚磷Gi菌株的活性试验的方法 5
2.3.5.1  Gi菌株在不同碳源、氮源的活性试验 6
2.3.5.2  Gi菌株不同环境条件的活性试验 6
2.3.5.3  Gi菌株不同电子受体的活性试验 6
2.3.6指标测定方法 6
3   结果与讨论 6
3.1  Gi菌株的形态观察及生理生化指标 6
3.2  Gi菌株的16SrDNA基因的序列、系统发育分析 7
3.3  Gi菌株的活性试验 8
3.3.1 营养因素对Gi菌株的活性影响 8
3.3.1.1  不同碳源对Gi菌株的活性影响 8
3.3.1.2  不同氮源对Gi菌株的活性影响 10
3.3.2环境条件对Gi菌株的活性影响 11
3.3.2.1  不同pH值对Gi菌株的活性影响 11
3.3.2.2  不同温度对Gi菌株的活性影响 12
3.3.2.3  不同ORP对Gi菌株的活性影响 14
3.3.3不同电子受体对Gi菌株的活性影响 15
3.3.4试验中发现的问题 16
4 结论 16
参 考 文 献 17
附录1 DNA测序结果 20
 
1,前言
    水体的富营养化现象在世界各地日趋严重，已经成为人类所面临的严重水环境问题之一。而引起藻类大量繁殖的主要因子是氮和磷，而藻类对磷的需求量约为氮需求量的（1/10）～（1/20），因此只要有这个水平的磷存在，就具有使藻类增值的能力，所以控制污染源、降低污水中的氮、磷，尤其是磷的含量是防止水体富营养化的主要任务[1]。